摘要
目的 在大肠埃希菌(E.coli)中表达登革病毒(dengue virus,DENV)NS2B-NS3蛋白酶,对表达条件进行优化,并测定酶活性,为抗DENV药物先导化合物的筛选与发现奠定基础。方法 将密码子优化的NS2B-NS3基因连接到pET-28a载体中,构建重组原核表达质粒pET-28a-NS2B-NS3,转化至E.coli Rosetta(DE3)感受态细胞中,IPTG诱导NS2BNS3蛋白酶表达。通过优化诱导时间、诱导温度和IPTG诱导浓度,确定NS2B-NS3蛋白酶在E.coli中的最佳表达条件。使用HisTrapTM亲和层析柱分离纯化NS2B-NS3蛋白酶,通过荧光共振能量转移(fluorescence resonance energy transfer,FRET)试验测定酶活性。结果 重组原核表达质粒pET-28a-NS2B-NS3经双酶切(NheⅠ/XhoⅠ)及测序证明构建正确。NS2B-NS3蛋白酶在E.coli中的最佳表达条件为:诱导温度20℃,诱导时间10 h,IPTG浓度0.2 mmol/L,表达量达20 mg/L。纯化的NS2B-NS3蛋白酶纯度大于90%,可与小鼠抗His-tag单克隆抗体特异性结合,且具有良好的水解活性,其比活力为16 111 U/mg、米氏常数(Km)值为16.46μmol/L、催化常数(kcat)值为0.028/s。结论 成功制备了高纯度、高活性的DENV NS2B-NS3蛋白酶,为NS2B-NS3蛋白酶抑制剂高通量筛选模型的建立奠定了实验基础。
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