摘要

目的 探讨环状RNA0001287(circ_0001287)和miR-21在糖尿病视网膜病变(DR)发病过程中的作用机制。方法 分离原代人RPE(phRPE)细胞用于circRNA芯片分析。体外培养ARPE-19细胞,并分为空白组、高糖组、阴性组、si-circ组、circ_0001287组、circ_0001287+阴性组、circ_0001287+miR-21组。构建抗circ_0001287的小干扰RNA(siRNA)寡核苷酸和含有靶向miR-21序列的模拟物以及miR-21 mimics质粒。阴性组、si-circ组、circ_0001287组、circ_0001287+阴性组、circ_0001287+miR-21组分别采用Lipofectamine2000试剂盒将空质粒、circ_0001287 siRNA、circ_0001287模拟物、circ_0001287模拟物+miRNA无序序列、circ_0001287模拟物+miR-21 mimics质粒转染到ARPE-19细胞。转染6 h后,用新鲜的正常培养基更换Opti-MEM培养基。空白组和高糖组细胞不作转染处理。空白组细胞用含5.5 mmol·L-1葡萄糖的培养液培养,高糖组细胞逐次用含15.5 mmol·L-1、25.5 mmol·L-1、35.5 mmol·L-1葡萄糖的培养液培养。而其余各组细胞用35.5 mmol·L-1葡萄糖处理48 h。采用RT-PCR检测circ_0001287和miR-21表达情况,CCK-8实验检测细胞增殖活性,双荧光素酶报告基因检测circ_0001287和miR-21的靶向关系,RNA免疫沉淀(RIP)法和生物素偶联探针Pull-down法验证circ_0001287和miR-21的靶向关系,Western blot法检测蛋白表达情况。结果 circRNA芯片筛选发现,hsa_circ_0001287在phRPE细胞中的表达下调。RT-PCR检测结果显示:与空白组相比,高糖组ARPE-19细胞中circ_0001287表达降低(P<0.05),并且具有剂量依赖性,而且随着葡萄糖浓度的增加,ARPE-19细胞中miR-21表达逐渐升高(P<0.05)。将siRNA与circ_0001287模拟物共转染,siRNA也能减少circ_0001287表达,表现为circ_0001287+阴性组circ_0001287相对表达量(0.70±0.03)较阴性组(0.98±0.04)显著降低(P<0.05)。对于转染circ_0001287-WT质粒的细胞,与对照模拟组(0.98±0.03)相比,miR-21模拟组荧光素酶相对酶活性降低(0.59±0.02,P<0.05);然而,对于转染circ_0001287-MUT质粒的细胞,对照模拟组和miR-21模拟组荧光素酶相对酶活性几乎一致(分别为0.96±0.05和1.00±0.04,P>0.05)。在抗Ago RIP实验中,与对照组相比,circ_0001287组中miR-21明显富集,表明miR-21可被生物素化circ_0001287探针显著下拉;Pull-down分析结果显示:与对照IgG相比,circ_0001287特异性探针下拉样品中circ_0001287和miR-21显著富集。在本实验中,circ_0001287+miR-21组细胞增殖率(78.25%±3.01%)低于circ_0001287+阴性组(90.88%±3.51%,P<0.05)。与空白组相比,用35.5 mmol·L-1葡萄糖处理的高糖组ARPE-19细胞PTEN蛋白表达显著下调(P<0.05),而circ_0001287组ARPE-19细胞PTEN蛋白表达较阴性组增加(P<0.05),circ_0001287+miR-21组ARPE-19细胞PTEN蛋白表达量则高于circ_0001287组(P<0.05)。结论 circ_0001287在phRPE细胞和高糖诱导的ARPE-19细胞中表达下调,上调circ_0001287可通过吸附miR-21和激活PTEN表达从而抑制糖尿病性RPE细胞损伤。

  • 单位
    河北北方学院附属第一医院

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